دسترسی نامحدود
برای کاربرانی که ثبت نام کرده اند
برای ارتباط با ما می توانید از طریق شماره موبایل زیر از طریق تماس و پیامک با ما در ارتباط باشید
در صورت عدم پاسخ گویی از طریق پیامک با پشتیبان در ارتباط باشید
برای کاربرانی که ثبت نام کرده اند
درصورت عدم همخوانی توضیحات با کتاب
از ساعت 7 صبح تا 10 شب
ویرایش: 2
نویسندگان: Ivano de Filippis
سری:
ISBN (شابک) : 9783030832162, 9783030832179
ناشر: Springer
سال نشر: 2022
تعداد صفحات: 273
زبان: English
فرمت فایل : PDF (درصورت درخواست کاربر به PDF، EPUB یا AZW3 تبدیل می شود)
حجم فایل: 5 مگابایت
در صورت تبدیل فایل کتاب Molecular Typing in Bacterial Infections, Volume II به فرمت های PDF، EPUB، AZW3، MOBI و یا DJVU می توانید به پشتیبان اطلاع دهید تا فایل مورد نظر را تبدیل نمایند.
توجه داشته باشید کتاب تایپ مولکولی در عفونت های باکتریایی، جلد دوم نسخه زبان اصلی می باشد و کتاب ترجمه شده به فارسی نمی باشد. وبسایت اینترنشنال لایبرری ارائه دهنده کتاب های زبان اصلی می باشد و هیچ گونه کتاب ترجمه شده یا نوشته شده به فارسی را ارائه نمی دهد.
این ویرایش دوم بهروزرسانیشده تایپ مولکولی در عفونتهای
باکتریایی، که در دو جلد ارائه شده است، عوامل بیماریزای
باکتریایی رایج و نادیده گرفته شده را پوشش میدهد و مؤثرترین
روشها برای شناسایی و طبقهبندی آنها را در پرتو اپیدمیولوژی
خاص آنها برجسته میکند. فصلهای جدیدی برای افزودن گونههای
جدید و همچنین نمای دیگری از نحوه استفاده از تایپ باکتریایی
گنجانده شده است. این کتابها منابع ارزشمندی برای تایپ مولکولی
عوامل بیماریهای عفونی هستند که هم در محیطهای تحقیقاتی و
آزمایشگاهی بالینی بیمارستانی و هم در مجموعههای کشت و در صنعت
با آن مواجه میشوند. هر یک از 21 فصل مروری بر رویکردهای
مولکولی خاص برای شناسایی و نوع موثر پاتوژن های مختلف
باکتریایی ارائه می دهد. فصلها در پنج بخش گروهبندی شدهاند
که شامل پاتوژنهای تنفسی و ادراری تناسلی (جلد اول) و
پاتوژنهای گوارشی و مرتبط با مراقبتهای بهداشتی و همچنین گروه
جدیدی از پاتوژنهای منتقله از طریق ناقل و ایمنی زیستی سطح 3
است که شامل توصیف روشهای تایپ مورد استفاده در آزمایشگاه
میکروبیولوژی سنتی در مقایسه با روشهای مولکولی اپیدمیولوژی
(جلد دوم). تایپ مولکولی در عفونت های باکتریایی جامع و به روز،
روش های پیشرفته ای را برای تشخیص دقیق و طبقه بندی صحیح انواع
مختلف ارائه می دهد که در کشف مسیرهای انتقال پاتوژن های انسانی
بسیار مهم است.
This updated second edition of Molecular Typing in Bacterial
Infections, presented in two volumes, covers both common and
neglected bacterial pathogenic agents, highlighting the most
effective methods for their identification and classification
in the light of their specific epidemiology. New chapters
have been included to add new species, as well as another
view of how bacterial typing can be used. These books are
valuable resources for the molecular typing of infectious
disease agents encountered in both research and hospital
clinical laboratory settings, as well as in culture
collections and in the industry. Each of the 21 chapters
provides an overview of specific molecular approaches to
efficiently detect and type different bacterial pathogens.
The chapters are grouped in five parts, covering respiratory
and urogenital pathogens (Volume I), and gastrointestinal and
healthcare-associated pathogens, as well as a new group of
vector-borne and Biosafety level 3 pathogens including a
description of typing methods used in the traditional
microbiology laboratory in comparison to molecular methods of
epidemiology (Volume II). Comprehensive and updated,
Molecular Typing in Bacterial Infections provides
state-of-the-art methods for accurate diagnosis and for the
correct classification of different types which will prove to
be critical in unravelling the transmission routes of human
pathogens.
Contents Contributors Part I: Gastrointestinal Pathogens 1: Campylobacter 1.1 Introduction 1.2 Early Typing Methods 1.3 Biochemical Tests 1.4 Phenotypic Methods 1.5 Enzyme-Based Methods 1.6 Pulsed-Field Gel Electrophoresis 1.7 Restriction Fragment Length Polymorphism of the flaA Gene (flaA-RFLP) 1.8 Commercial ELISA Kits 1.9 Molecular Methods 1.9.1 Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Time-of-Flight (MALDI-TOF) Mass Spectrometry 1.9.2 PCR-Based Methods 1.9.3 Sequence-Based Methods 1.9.3.1 MLST 1.9.3.2 rMLST 1.9.3.3 cgMLST 1.9.3.4 wgMLST 1.9.4 Parallel Sequencing Methods 1.10 Concluding Remarks 1.11 Summary References 2: Clostridioides difficile 2.1 Introduction 2.2 Virulence Factors 2.3 Epidemiology 2.4 Molecular Assays for C. difficile Detection 2.5 C. difficile Typing Methodologies 2.5.1 Restriction Endonuclease Analysis (REA) 2.5.2 Pulsed-Field Gel Electrophoresis (PFGE) 2.5.3 PCR Ribotyping 2.5.4 Multilocus Sequence Typing (MLST) 2.5.5 Repetitive Sequence-Based PCR Typing (Rep-PCR) 2.5.6 Toxinotyping 2.5.7 Multilocus Variable-Number Tandem-Repeat Analysis (MLVA) 2.5.8 Surface-Layer Protein A-Encoding Gene Typing (slpAST) as a Substitute for Serotyping 2.5.9 Whole-Genome Sequencing (WGS) 2.5.10 CRISPR-Cas (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats (CRISPR)) 2.5.11 DNA Microarray-Based Genotyping 2.6 Conclusions and Perspectives 2.7 Summary References 3: Cronobacter 3.1 Introduction to the Cronobacter Genus 3.2 Cronobacter Pathogenicity and Virulence 3.2.1 Cronobacter Infections 3.2.2 Virulence Traits in Cronobacter spp. 3.3 Cronobacter in Food Industry 3.4 Cronobacter Isolation Methods in PIF and Other Foods 3.5 Cronobacter Identification Methods 3.6 Molecular Typing of Cronobacter Isolates 3.6.1 Pulsed-Field Gel Electrophoresis (PFGE) Analysis of Cronobacter Strains 3.6.2 PCR-Based Serotyping of Cronobacter spp. 3.6.3 Capsular Profiling 3.6.4 Standardized Seven-Loci Multilocus Sequence Typing (MLST) 3.6.5 Ribosomal MLST (53 Loci) 3.6.6 Core-Genome MLST (1836 Loci) 3.6.7 CRISPR (Clustered Regularly Interspersed Short Palindromic Repeat)-Cas Array Profiling 3.6.8 Single-Nucleotide Polymorphism (SNP) Analysis 3.7 Summary References 4: Oral and Intestinal Bacteroidetes 4.1 Introduction 4.2 The Genus Bacteroides 4.2.1 The Genus Bilophila 4.2.2 Bacteroides: Methods 4.2.2.1 Phenotypic Identification of Gram-Negative Anaerobic Saccharolytic Rods 4.2.2.2 Concept of PCR Fingerprinting 4.2.3 Bacteroides: Detailed Protocols 4.2.3.1 Bacteroides Strains, Culture Conditions, and DNA Extraction 4.2.3.2 PCR Amplification and Fingerprinting 4.2.4 Bacteroides: Results 4.2.4.1 PCR Fingerprinting 4.2.4.2 Characterization of Species and Establishment of Genetic Markers 4.2.4.3 Development of Specific PCR for Group Resp. Species Detection of B. fragilis 4.2.4.4 Amplification of the Enterotoxin Gene in B. fragilis Isolates 4.2.5 Bacteroides: Discussion 4.3 Porphyromonas: A Genus Becoming Diverse 4.3.1 Porphyromonas: Methods 4.3.1.1 The General Concept of ITS Determination 4.3.1.2 The Selection of Primers 4.3.1.3 The Sample Collection and DNA Extraction 4.3.2 Porphyromonas: Detailed Protocol 4.3.2.1 Bacterial Strains, Culture Conditions, and DNA Extraction 4.3.2.2 PCR Amplification and DNA Sequence Analysis 4.3.3 Porphyromonas: Results 4.3.4 Porphyromonas: Discussion 4.4 General Discussion and Final Remarks 4.5 Summary References 5: Vibrio cholerae 5.1 Introduction 5.2 Background Information on V. cholerae 5.3 Polymerase Chain Reaction-Based Typing 5.3.1 Random Amplification of Polymorphic DNA (RAPD) Profiles 5.3.2 Other PCR-Based Typing Methods 5.3.3 Mobile Genetic Elements (MGEs) 5.3.4 Plasmids 5.3.5 Insertion Sequences (IS Elements) 5.3.6 Integrons and ICEs 5.4 Vibrio cholerae Pathogenicity Island and Vibrio Seventh Pandemic Islands 5.5 CTX Prophages 5.6 Multilocus Enzyme Electrophoresis 5.7 Ribotyping 5.8 Pulsed-Field Gel Electrophoresis 5.9 DNA Sequence-Based Typing Systems 5.9.1 Multilocus Sequence Typing 5.9.2 Multiple-Locus Variable Number of Tandem Repeat Analysis 5.10 Fingerprinting of Virulence Genes 5.11 Evidence Showing Intercontinental Spread of V. cholerae O1 5.12 Quorum-Sensing Systems 5.13 Microarray Analysis 5.14 Whole Genome Approach 5.15 Epilogue 5.16 Summary References Part II: Pathogens Causing Healthcare-Associated Infections 6: Acinetobacter baumannii 6.1 Introduction 6.2 Microbiology of Acinetobacter spp. 6.3 Taxonomy of Acinetobacter spp. 6.4 Clinical Significance of A. baumannii 6.5 Antibiotic Resistance 6.6 Epidemiology of Carbapenem-Resistant A. baumannii 6.7 Typing Methods for Acinetobacter spp. 6.7.1 Phenotypic Typing 6.7.2 Genotypic Typing 6.7.2.1 Band Pattern 6.7.2.2 Partial Sequencing 6.7.2.3 Whole Genome Sequencing 6.7.2.4 WGS Application 6.7.2.5 WGS Technology and Bioinformatics 6.8 Concluding Remarks and Recommendations 6.9 Summary References 7: Enterococcus 7.1 Introduction 7.2 Characteristics and Current Classification of the Genus 7.3 Clinical Significance and Epidemiology 7.4 Resistance to Antimicrobial Agents 7.5 Typing Methods 7.5.1 Early Typing Methods 7.5.2 Molecular Typing Methods 7.6 Summary References 8: Pseudomonas aeruginosa 8.1 Phenotyping Methods for P. aeruginosa 8.2 Restriction-Based Methods 8.2.1 Pulsed-Field Gel Electrophoresis (PFGE) 8.2.2 Restriction Fragment Length Polymorphism (RFLP) 8.2.3 Ribotyping 8.3 Amplified-Based Methods 8.3.1 Random Amplified of Polymorphic DNA (RAPD) 8.3.2 Amplified Fragment Length Polymorphisms (AFLP) 8.3.3 Multilocus Variable-Number Tandem Repeat (VNTR) Analysis (MLVA) 8.4 Sequencing-Based Method 8.4.1 Multilocus Sequence Typing (MLST) 8.4.2 Double-Locus Sequence Typing (DLST) 8.4.3 Whole Genome Sequencing (WGS) 8.5 Summary References 9: Staphylococci 9.1 Introduction 9.2 Identification of Staphylococcal Species 9.3 MRSA Identification and SCCmec Typing 9.4 Historical Typing Methods 9.5 Current Molecular Typing Methods 9.5.1 Pulsed-Field Gel Electrophoresis (PFGE) Typing 9.5.2 Staphylococcal Protein A (spa) Typing 9.5.3 Multilocus Sequence Typing (MLST) 9.5.4 Microarray 9.6 Whole Genome Sequencing (WGS) and the Future of MRSA Typing 9.7 Conclusions 9.8 Summary References Part III: Vector-Borne and Biosafety Level 3 Pathogens 10: Bartonellaceae 10.1 Introduction 10.2 Phenotypic Techniques 10.3 Molecular Techniques 10.3.1 Species Identification 10.3.1.1 16S-Based Techniques 10.3.1.2 Amplified Ribosomal DNA Restriction Analysis 10.3.1.3 Ribotyping 10.3.1.4 DNA-DNA Hybridization 10.3.1.5 Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Time-of-Flight Mass Spectrometry 10.3.1.6 Specific PCRs 10.3.2 Clonal Determination 10.3.2.1 Multilocus Sequence Typing 10.3.2.2 Multispacer Typing 10.3.2.3 Multilocus Variable Copy Numbers of Tandem Repeats Analysis 10.3.2.4 Pulsed-Field Gel Electrophoresis 10.4 Whole Genomic Sequencing 10.5 PCR Typing-Based Techniques 10.5.1 Amplified Fragment Length Polymorphism 10.5.2 Repetitive Extragenic Palindromic PCR 10.5.3 Enterobacterial Repetitive Intergenic Consensus PCR 10.5.4 Randomly Amplified Polymorphic DNA PCR 10.5.5 16S rRNA Type-Specific Amplification 10.5.6 Infrequent Restriction Site PCR 10.6 Summary References 11: Brucella 11.1 Introduction 11.1.1 Brucellosis 11.1.2 The Genus Brucella 11.1.3 Significance of Molecular Typing Approaches to Brucella Control and Eradication 11.2 PCR-Based Molecular Detection Methods 11.2.1 Brucella Genus-Specific PCR Targets: bcsp31 11.2.2 Brucella Genus-Specific PCR Targets: IS711 11.2.3 Brucella Genus-Specific PCR Targets: 16S rRNA, omp, per and Others 11.2.4 Application of PCR to Clinical Samples 11.3 Early Approaches to Molecular Typing 11.4 Molecular Typing Assays Discriminating Between Brucella Species 11.4.1 Single Loci Discriminating Between Species 11.4.2 Multiplex Conventional PCR Approaches Discriminating Between Species 11.4.3 Targeted Real-Time Assays 11.4.4 Single-Species Assays 11.4.5 Real-Time PCR Assays Based on Canonical SNPs 11.4.6 High-Resolution Melt (HRM) Analysis Assays Based on Canonical SNPs 11.4.7 Vaccine Strain-Specific Assays 11.5 Approaches to Sub-Species Molecular Typing 11.5.1 Multi-Locus Sequence Typing (MLST) 11.5.2 Multi-Locus Variable Number Tandem Repeat Analysis (MLVA) 11.6 Whole-Genome Sequencing-Based Approaches 11.6.1 Early Whole-Genome Sequencing Studies 11.6.2 High-Resolution Strain Typing Using Whole-Genome Sequencing 11.6.3 Genome-Scale MLST Approaches (cgMLST and wgMLST) 11.6.4 Whole-Genome SNP Approaches 11.6.5 In Silico Extraction of Data for Existing Typing Schemes 11.7 Conclusions and Future Directions References 12: Coxiella burnetii 12.1 Introduction 12.2 The Pathogen 12.3 Molecular Typing Methods 12.3.1 History – Typing Is an “Old” Science in Q Fever 12.3.2 Today – Reduced to the Max – A Lot of Epidemiological Studies – No Use in Routine Diagnostics 12.3.3 On the Edge to Tomorrow – Whole Genome Sequencing and Enrichment Techniques 12.3.4 Database Issues 12.4 Conclusions References Index