Elektronenmikroskopische und histochemische Untersuchungen an Acanthoren, den ersten Larvalstadien der Acanthocephala

Elektronenmikroskopische und histochemischeUntersuchungen an Acanthoren, den erstenLarvalstadien der Acanthocephala......Page 8
Inhalt......Page 9
1 Einleitung......Page 15
2.1.1.1 Macracanthorhynchus hirudinaceus (Klasse: Archiacanthocephala)......Page 25
2.1.1.2 Moniliformis moniliformis (Klasse: Archiacanthocephala)......Page 27
2.1.1.3 Paratenuisentis ambiguus (Klasse: Eoacanthocephala)......Page 29
2.1.2.2 Gammarus tigrinus (Ord. Amphipoda)......Page 31
2.1.2.3 Gammarus pulex (Ord. Amphipoda)......Page 32
2.2.1 Hälterung von Periplaneta americana......Page 33
2.2.2 Hälterung von Gammarus tigrinus......Page 34
2.3 Gewinnung der reifen Acanthocephaleneier......Page 35
2.4.1 Infektion von Periplaneta americana......Page 37
2.4.2 Infektion der verwendeten Amphipoden- und Isopodenarten......Page 38
2.4.3 Infektion von Rattus norvegicus......Page 39
2.5 In-vitro-Versuche zum Schlüpfverhalten der Acanthoren......Page 40
2.5.2.2 Verwendung von feinkörnigem Quarzsand bzw. Siliciumoxid......Page 41
2.5.6 Lagerung in verschiedenen Wassertypen......Page 42
2.7.1 In-vitro-geschlüpfte Acanthoren......Page 43
2.7.2 Acanthoren, die im Darm von Zwischenwirten geschlüpft sind......Page 44
2.8.1.1 Grundlagen der Transmissions-Elektronenmikroskopie......Page 45
2.8.1.2 Probenaufbereitung......Page 46
2.8.1.3 Elektronenmikroskopische Auswertung......Page 48
2.8.2.2 Probenaufbereitung......Page 49
2.8.2.3 Elektronenmikroskopische Auswertung......Page 50
2.10 “Cathepsin L Proteinase” - Nachweis mittels SDS-Page......Page 51
2.10.2 Grundlagen der SDS-Page......Page 52
2.10.4 Gesamtprotein-Mengenbestimmung......Page 54
2.10.5 Durchführung SDS-Page......Page 55
2.10.6.1 Durchführung “Western Blotting”......Page 56
2.10.8 Berechnung des Probengehaltes an “Cathepsin L Proteinase”......Page 57
3.1 Die Eihüllen des Archiacanthocephalen M. moniliformis......Page 59
3.2 Die Eihüllen des Archiacanthocephalen M. hirudinaceus......Page 70
3.3 Die Eihüllen des Eoacanthocephalen P. ambiguus......Page 75
3.4 Die Eihülle der Palaeacanthocephala......Page 83
3.5 Die Überlebensfähigkeit der Acanthoren im reifen Ei......Page 89
3.6 Die Stimulation der Acanthoren zum Schlüpfen......Page 90
3.7 Die Eigenbewegung der Acanthoren......Page 93
3.7.1 Der Schlüpfablauf von Archi- und Eoacanthocephalen im Vergleich......Page 102
3.8 Ausstattung des Archiacanthocephalen M. hirudinaceus mit Cathepsin L Proteinase......Page 112
3.9.1 Infektionsversuche mit Zwischenwirten von verschiedenen Acanthocephalenarten......Page 115
3.9.3 Parasitierungsrate von R. norvegicus mit dem Acanthocephalen M. moniliformis......Page 116
3.10 Die Gestalt und Morphologie der Acanthoren......Page 117
3.10.1 Überblick über den geschlüpften Acanthor......Page 118
3.10.2 Die apikalen Haken des Acanthors......Page 127
3.10.3 Die Körperstacheln des Acanthors......Page 148
3.10.4 Die Muskulatur des Acanthors......Page 164
3.10.5 Die Oberfläche und das fusionierte Kryptensystem des Acanthors......Page 179
4.1 Die Eihülle der Acanthoren......Page 201
4.1.1 Archiacanthocephala......Page 203
4.1.1.1 Morphologie der Archiacanthocephaleneihüllen......Page 204
4.1.2 Eoacanthocephala......Page 208
4.1.3 Palaeacanthocephala......Page 211
4.2 Überlebensfähigkeit der Acanthoren im reifen Ei......Page 212
4.3 Stimulation der inaktiven Acanthoren zum Schlüpfen......Page 214
4.3.1 Zwischenwirtspezifität......Page 216
4.4 Die Bedeutung der aktiven Eigenbewegung der Acanthoren......Page 218
4.4.1 Bedeutung der Bewegungsfähigkeit während des Schlüpfprozesses......Page 219
4.4.2 Bedeutung der Bewegungsfähigkeit im Darmlumen eines Zwischenwirts......Page 220
4.4.3 Bedeutung der Bewegungsfähigkeit während der Darmwandpenet ration......Page 222
4.4.4 Die Lebensspanne aktivierter Acanthoren......Page 224
4.5 Bedeutung der Cysteinproteinase Cathepsin L für die Acanthoren von M. hirudinaceus......Page 225
4.6.1 Experimentelle Parasitierungsraten von P. americana mit M. moniliformis......Page 229
4.7 Die Gestalt und Morphologie der Acanthoren......Page 232
4.7.2 Die apikalen Haken des Acanthors......Page 234
4.7.3 Die Körperstacheln des Acanthors......Page 237
4.7.4 Die innere Organisation des Acanthors......Page 239
4.7.4.1 Die Muskulatur des Acanthors......Page 241
4.7.4.2 Das fusionierte Kryptensystem des Acanthors......Page 244
4.8 Ausblick......Page 247
5 Zusammenfassung......Page 249
6 Literaturverzeichnis......Page 253
7.1.1.1 Methylenblau mit NaCl......Page 265
7.1.2.1 4%-Osmiumtetroxidlösung......Page 266
7.1.3.1 Spurr-Einbettungsmedium (nach Spurr, 1969)......Page 267
7.1.4.1 Uranylacetat (in gesättigter wässriger Lösung)......Page 268
7.1.5.1 0.32%-Polyvinylformaldehyd (Formvar)......Page 269
7.2 Protokoll zur Probenaufbereitung für die TEM......Page 270
7.3 Protokoll zur Probenaufbereitung für die REM......Page 272
7.4.4 10x SDS Laufpuffer......Page 274
7.4.8 0,5% Bromphenolblau-Lösung......Page 275
7.5.2 10 x TBS......Page 276
7.5.4 5% Magermilch......Page 277
8 Danksagung......Page 279